Biotechnologies · 1ère · Programme officiel

Techniques de laboratoire en biotechnologies en 1ère

Cours complet, points clés à retenir et exercices d'entraînement de techniques de laboratoire en biotechnologies pour les élèves de 1ère. Conforme au programme officiel.

Réviser notion par notion

Ce que tu vas réviser

  • Spectrophotométrie UV-visible
  • Centrifugation, électrophorèse, chromatographie
  • Pipetage et stérilisation
  • Bonnes pratiques de laboratoire et traçabilité

Spectrophotométrie UV-visible

Technique qui mesure la quantité de lumière absorbée par une solution à une longueur d'onde donnée, dans le visible (solutions colorées) ou dans l'ultraviolet (par exemple 280 nm pour les protéines, 260 nm pour les acides nucléiques). Plus la solution est concentrée, plus elle absorbe de lumière.

Exemple

Quand tu mets des lunettes de soleil, elles absorbent une partie de la lumière. La spectrophotométrie fonctionne pareil : elle mesure combien de lumière passe à travers une solution.

À retenir : La loi de Beer-Lambert relie l'absorption à la concentration : $A = \varepsilon \times l \times c$ où A est l'absorbance (sans unité), ε le coefficient d'absorption, l l'épaisseur de la cuve et c la concentration ; elle n'est valable que pour des solutions assez diluées.

Électrophorèse et séparation des molécules

Technique qui sépare les molécules (protéines, ADN) en les faisant migrer dans un gel sous l'effet d'un champ électrique. Les molécules chargées se déplacent vers l'électrode opposée.

Exemple

C'est comme une course à travers un filet à mailles serrées : le champ électrique tire chaque molécule chargée vers l'électrode de signe opposé à sa charge, et les petites molécules se faufilent plus vite dans les mailles du gel que les grosses, ce qui les sépare selon leur taille et leur charge.

À retenir : Les molécules négatives migrent vers l'anode (pôle positif) et les positives vers la cathode (pôle négatif).

Chromatographie : séparation par affinité

Technique qui sépare les composants d'un mélange en les faisant passer à travers une phase stationnaire. Chaque composant se déplace à une vitesse différente selon son affinité.

Exemple

Comme l'encre d'un feutre sur du papier dont le bas trempe dans l'eau : l'eau monte et entraîne les différents colorants à des vitesses différentes, ce qui les sépare. En chromatographie, chaque molécule se déplace différemment selon son affinité pour la phase stationnaire et pour le solvant.

À retenir : Le facteur de rétention $R_f = \frac{\text{distance parcourue par le composé}}{\text{distance parcourue par le solvant}}$ permet d'identifier les molécules.

Centrifugation et séparation par densité

Technique qui sépare les composants d'une solution selon leur masse, leur taille et leur densité en les faisant tourner très vite. Les particules les plus grosses ou les plus denses se déposent au fond du tube (culot), le reste forme le surnageant.

Exemple

Quand tu essores une salade, tu la fais tourner rapidement : l'eau s'éjecte vers l'extérieur. La centrifugeuse fonctionne pareil mais beaucoup plus vite pour séparer les cellules, l'ADN ou les protéines.

À retenir : Plus la vitesse de rotation (en tours par minute) et le rayon du rotor sont grands, plus l'accélération centrifuge (exprimée en multiples de g) est forte et plus des particules petites peuvent être séparées.

Pipetage et stérilisation

Le pipetage consiste à prélever un volume précis de liquide : pipette jaugée (un seul volume, très précise), pipette graduée, micropipette réglable (quelques µL à 1 mL) avec cône à usage unique. On ne pipette jamais à la bouche : on utilise une propipette ou un pipeteur. La stérilisation détruit tous les micro-organismes, y compris les spores (autoclave : 121 °C pendant 15 à 20 minutes) ; la désinfection n'en élimine qu'une partie.

Exemple

Pour ensemencer une boîte de Petri, on travaille près de la flamme d'un bec Bunsen ou sous un poste de sécurité microbiologique, avec du matériel stérile : c'est le travail en conditions aseptiques.

À retenir : Choisir la pipette adaptée au volume et à la précision voulus, ne jamais pipeter à la bouche ; stériliser le matériel et les milieux (autoclave) et travailler en conditions aseptiques.

Bonnes pratiques de laboratoire et traçabilité

Ensemble de règles et de protocoles pour travailler en sécurité au laboratoire et garder une trace écrite de toutes les manipulations. Cela garantit la fiabilité des résultats.

Exemple

Comme dans une cuisine professionnelle : tu dois noter la date, l'heure, les ingrédients utilisés et les étapes. Au labo, c'est pareil pour pouvoir refaire l'expérience et prouver ce qu'on a fait.

À retenir : La traçabilité complète (qui, quand, comment, avec quel matériel) est obligatoire pour valider un résultat scientifique.

Les points clés

  • La spectrophotométrie mesure l'absorbance pour déterminer la concentration d'une solution
  • L'électrophorèse sépare les molécules chargées grâce à un champ électrique
  • La chromatographie sépare les composants selon leur affinité pour la phase stationnaire
  • La centrifugation utilise la force centrifuge pour séparer par densité
  • La traçabilité complète est essentielle pour la validité scientifique des résultats

L'essentiel

Les techniques de laboratoire en biotechnologies (spectrophotométrie, électrophorèse, chromatographie, centrifugation) permettent de séparer et d'analyser les molécules biologiques, et toutes les manipulations doivent être tracées pour garantir la fiabilité des résultats.

Exercices d'entraînement

Entraîne-toi sur ces exercices, puis fais-toi corriger pas à pas par le tuteur.

Exercice 1

Une solution de protéine est placée dans un spectrophotomètre réglé à 280 nm. L'absorbance mesurée est 0,5. On donne le coefficient d'absorption massique de cette protéine : $\varepsilon = 1{,}4$ $\text{L·g}^{-1}\text{·cm}^{-1}$, et l'épaisseur de la cuve : l = 1 cm. Calcule la concentration massique de la protéine.

Corrige cet exercice avec le tuteur →

Exercice 2

Tu dois séparer trois protéines (A, B, C) d'un mélange. La protéine A a une masse de 20 kDa, B de 50 kDa et C de 100 kDa. Quelle technique choisirais-tu et pourquoi ? Explique comment les protéines se sépareraient.

Corrige cet exercice avec le tuteur →

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